ZEISS Correlative Cryo Workflow
Producto

ZEISS Correlative Cryo Workflow

Preparación de laminilla de TEM y captura de imágenes de volumen en condiciones criogénicas

ZEISS Correlative Cryo Workflow conecta la microscopía electrónica de barrido láser widefield y de barrido de haz de iones focalizado en un procedimiento fluido y fácil de usar. La solución proporciona el hardware y el software optimizados para las necesidades de los flujos de trabajo criogénicos, desde la localización de macromoléculas fluorescentes hasta la captura de imágenes de volumen con alto contraste y el adelgazamiento de la laminilla en rejilla para la tomografía electrónica criogénica.

  • Flujo de trabajo criogénico fluido en múltiples modalidades.
  • Captura de imágenes de fluorescencia en alta resolución.
  • Captura de imágenes de volumen de alto contraste y reconstrucción en 3D.
  • Adelgazamiento de la laminilla en rejilla específico para aplicaciones criogénicas de TEM.
  • Múltiples usos para aplicaciones criogénicas y a temperatura ambiente.

Captura de imágenes del estado casi original

Con ZEISS Correlative Cryo Workflow, dominará la compleja combinación de diferentes modalidades de captura de imágenes en condiciones criogénicas.

Un flujo de trabajo simplificado para ayudarle a centrarse en su investigación

Con ZEISS Correlative Cryo Workflow, dominará la compleja combinación de diferentes modalidades de captura de imágenes en condiciones criogénicas. La solución del flujo de trabajo conecta la microscopía óptica y electrónica, permitiendo la captura de imágenes de volumen y la producción eficiente de laminillas de TEM. Los accesorios específicos simplifican el flujo de trabajo y facilitan una transferencia segura de muestras criogénicas entre los microscopios. Se garantiza la gestión de datos mediante ZEN Connect, que mantiene sus datos contextualizados durante todo el flujo de trabajo. Una serie de herramientas de procesamiento le ayudan a realzar los resultados de la captura de imágenes.

Células de levadura con doble marcado (CNM67-tdTomato y NUP-GFP). Imagen de LSM (izquierda) e imagen de Crossbeam (derecha).
Células de levadura con doble marcado (CNM67-tdTomato y NUP-GFP). Imagen de LSM (izquierda) e imagen de Crossbeam (derecha). Muestra cortesía de M. Pilhofer, ETH Zürich, Suiza
Muestra cortesía de M. Pilhofer, ETH Zürich, Suiza

Células de levadura con doble marcado (CNM67-tdTomato y NUP-GFP). Imagen de LSM (izquierda) e imagen de Crossbeam (derecha).

Componentes superiores que le proporcionan la mejor calidad de datos de su clase

Gracias a los objetivos compatibles con criogenización y la alta sensibilidad del detector Airyscan, los sistemas ZEISS LSM le permiten detectar proteínas y estructuras celulares con alta resolución, mientras que la iluminación suave y las bajas temperaturas constantes evitan que sus muestras se desvitrifiquen. ZEISS Crossbeam FIB-SEM le permite disfrutar de la captura de imágenes volumétrica de alto contraste, incluso sin teñir sus muestras con metales pesados. Ambas modalidades proporcionan información estructural y funcional valiosa que puede ayudarle a entender en profundidad la ultraestructura, tanto si se sigue con estudios TEM como si no.

Leyenda: Células de levadura con doble marcado (CNM67-tdTomato y NUP-GFP). Imagen de LSM (izquierda) e imagen de Crossbeam (derecha). Muestra cortesía de M. Pilhofer, ETH Zürich, Suiza

Instalación central de captura de imágenes con equipo criogénico

Soluciones multiusos para mantener la productividad de su centro de captura de imágenes

A diferencia de otras soluciones, los microscopios ZEISS implicados en el flujo de trabajo no solo se pueden usar para la microscopía criogénica, sino también para aplicaciones a temperatura ambiente, lo cual es especialmente ventajoso cuando los microscopios no se utilizan exclusivamente para experimentos criogénicos. La transformación de los instrumentos del uso criogénico a temperatura ambiente es rápida y no requiere experiencia técnica. La flexibilidad proporciona a los usuarios más tiempo para los experimentos. Los centros de captura de imágenes se benefician de una mejor utilización y un retorno a la inversión más rápido.

ZEISS Correlative Cryo Workflow de un vistazo

Flujo de trabajo criogénico correlativo
Flujo de trabajo criogénico correlativo

Ventajas

  • Sistemas portadores HPF con muestras vitrificadas
  • Rejillas de TEM con muestras vitrificadas
  • Sistemas portadores HPF con muestras vitrificadas (haga clic para conocer más información); imagen cortesía de: Anat Akiva y Nico Sommerdijk, Radboud University Medical Center (Países Bajos)

    Sistemas portadores HPF con muestras vitrificadas

    Sistemas portadores HPF con muestras vitrificadas. El ejemplo de la izquierda muestra contaminación por hielo y desvitrificación y se eliminó de la captura de imágenes EM subsiguiente. El ejemplo de la derecha muestra zonas con contaminación por hielo, pero también zonas con regiones bien vitrificadas (áreas translúcidas).

    Las muestras se inspeccionaron en busca de daños por hielo usando diferentes métodos de contraste (fluorescencia, luz reflejada) en el microscopio óptico.

    El ejemplo de la izquierda muestra contaminación por hielo y desvitrificación y se eliminó de la captura de imágenes EM subsiguiente. El ejemplo de la derecha muestra zonas con contaminación por hielo, pero también zonas con regiones bien vitrificadas (áreas translúcidas).

    Sistemas portadores HPF con muestras vitrificadas (haga clic para conocer más información); imagen cortesía de: Anat Akiva y Nico Sommerdijk, Radboud University Medical Center (Países Bajos)

  • Rejillas TEM con muestras vitrificadas

    Rejillas TEM con muestras vitrificadas

    Rejillas de TEM con muestras vitrificadas

    La imagen de la izquierda muestra cristales de hielo encima de una rejilla. No hay contaminación por hielo visible en la rejilla de TEM derecha.

    Rejillas TEM con muestras vitrificadas. (haga clic para obtener más información)

Evaluación de la calidad de una muestra y prevención de daños en la muestra

La pérdida de muestras, la contaminación por hielo y la desvitrificación son problemas conocidos en la microscopía criogénica. ZEISS Correlative Cryo Workflow está diseñado para proteger sus preciadas muestras vitrificadas frente a muchas dificultades imaginables que pueden surgir durante este ambicioso flujo de trabajo.

El kit de accesorios Cryo de ZEISS, junto con las capacidades de captura de imágenes de ZEISS LSM/Airyscan y ZEISS Crossbeam, mitiga el riesgo de perder o destruir su muestra mientras trabaja en condiciones criogénicas.

Antes de gestionar su muestra en el flujo de trabajo, la vitrificación es un desafío en sí misma. A pesar del reciente desarrollo de las tecnologías de vitrificación, las muestras a menudo siguen cubiertas bajo una gruesa capa de hielo o solo están parcialmente vitrificadas y presentan áreas de hielo no amorfo. Una mala vitrificación destruye la ultraestructura de células y tejidos. Estas áreas solo se pueden identificar en un TEM, a menos que su microscopio óptico o el FIB-SEM proporcionen métodos para la evaluación de la muestra en las primeras fases del flujo de trabajo.

Los LSM de ZEISS ofrecen dicha capacidad de evaluación gracias a que permiten diferentes métodos de contraste. El excelente rendimiento de contraste de ZEISS Crossbeam también permite una evaluación fiable de la calidad de la muestra. Esto le ahorrará tiempo y mejorará la eficiencia de los experimentos.

  • Células HeLa congeladas por inmersión (marcadas con histona 2-GFP) que ilustran las condiciones ideales para la captura de imágenes subsiguiente. La capa de hielo tiene aprox. 6,8 μm de grosor y cubre las células vitrificadas. Estas células son perfectamente aptas para el análisis FIB-SEM posterior.

Medición del grosor del hielo y abordaje eficiente de la región de interés

La medición del grosor del hielo es fundamental para juzgar la calidad de las muestras y para ubicar las células de interés dentro de la muestra vitrificada. Su muestra se puede validar fácilmente mediante la microscopía óptica. La captura de imágenes por fluorescencia confocal y luz reflejada proporciona las primeras pistas sobre la calidad y le permite ubicar con claridad las células con potencial.

Los patrones de telaraña borrosa de la señal fluorescente a menudo indican una mala congelación. Además, las muestras congeladas por inmersión mostrarán diferente calidad de congelación y preservación dentro de una misma muestra. La información sobre el grosor y la calidad del hielo permite ahorrar tiempo con la preselección de células antes de avanzar al siguiente paso dentro del flujo de trabajo criogénico correlativo.

Vista general de la solución

Kit de accesorios ZEISS Cryo

Kit de accesorios ZEISS Cryo

Kit de accesorios Cryo de ZEISS

Kit de accesorios ZEISS Cryo

Kit de accesorios Cryo de ZEISS

ZEISS Correlative Cryo Workflow le permite usar varios portamuestras. Tanto si utiliza rejillas de TEM, AutoGrid, discos de zafiro o planchetas HPF, puede emplear el kit de accesorios Cryo para poder cargar, transferir y almacenar fácilmente su muestra. Una colección de artículos y herramientas permite el manejo seguro de la muestra durante todo el flujo de trabajo. Los componentes son compatibles con:

  • Platina de microscopía criocorrelativa Linkam CMS196V³
  • Sistema criogénico Quorum PP3010Z
ZEISS Crossbeam: subplatina criogénica rotatoria

ZEISS Crossbeam: subplatina criogénica rotatoria

ZEISS Crossbeam: Subplatina criogénica rotatoria

ZEISS Crossbeam: subplatina criogénica rotatoria

Transferencia fácil y manipulación segura de la muestra dentro de ZEISS Crossbeam

ZEISS Correlative Cryo Workflow incluye Quorum PP3010Z, un sistema de preparación criogénica con refrigeración de gas muy automatizado y fácil de usar.

  • La cámara de criopreparación bombeada turbomolecular incluye herramientas para la sublimación controlada y automática y el recubrimiento mediante deposición.
  • Desde la cámara de preparación criogénica conectada directamente a la cámara de ZEISS Crossbeam, la muestra vitrificada se transfiere a una platina fría muy estable para la captura de imágenes y el fresado.
  • La trampa de frío en la cámara de preparación criogénica y en la cámara de Crossbeam protege la muestra frente a la contaminación por hielo.
  • Se garantiza el enfriamiento continuo durante al menos 24 horas mediante el sistema de enfriamiento CHE3010 fuera de la columna.
  • Todos los componentes criogénicos de Quorum se controlan mediante la estación de trabajo Prepdek®, incluyendo el tubo de almacenamiento de vacío para el dispositivo de transferencia criogénica y el rastrillo de preparación de TEM para la estación de carga de ZEISS.

Las modalidades más fiables de captura de imágenes combinadas

  • Microscopía confocal y widefield criogénica combinada con captura de imágenes criogénica de volumen SEM y preparación de laminilla TEM

Microscopía confocal y widefield criogénica

ZEISS Axio Imager, el microscopio óptico ideal para ZEISS Correlative Cryo Workflow, se puede equipar con la platina criogénica CMS196V3 de Linkam. En función de sus requisitos, puede configurar Axio Imager como un sistema widefield (con Apotome 3 para obtener conjuntos de datos en 3D) y LSM 900/980 con Airyscan 2 para la captura de imágenes confocales en alta resolución.

Tanto el LSM como el microscopio widefield son herramientas multiusos que se pueden transformar rápidamente desde experimentos con temperaturas criogénicas a experimentos con temperatura ambiente y viceversa, sin afectar negativamente a la calidad de imagen.

Captura de imágenes de volumen SEM criogénicas y preparación de laminilla de TEM

ZEISS Crossbeam está diseñado para ofrecerle la máxima facilidad de uso y el mejor contraste de la imagen. Incluso con las muestras vitrificadas no teñidas, este FIB-SEM genera imágenes de alto contraste a temperaturas criogénicas, permitiendo investigar la ultraestructura de las células y los tejidos, y haciendo que los compartimentos celulares sean claramente visibles. ZEISS Crossbeam también abre la posibilidad de observar el procedimiento de captura de imágenes y fresado en tiempo real. Puede controlar de forma precisa el proceso de fresado y asegurar el adelgazamiento dirigido en la rejilla de laminillas de TEM ultrafinas.

ZEISS Crossbeam se puede usar como herramienta multiusos sin afectar negativamente al rendimiento.

Juego de datos criogénicos correlativos en ZEISS ZEN Connect

Juego de datos criogénicos correlativos en ZEISS ZEN Connect

Juego de datos criogénicos correlativos en ZEISS ZEN Connect

Juego de datos criogénicos correlativos en ZEISS ZEN Connect

Todo junto: un paquete de software bien diseñado

Para asegurar un flujo de trabajo criogénico correlativo optimizado y que los distintos componentes funcionen juntos sin problemas, las plataformas de software implicadas se ampliaron a fin de incluir funciones específicas de la criogenización. Se han desarrollado módulos de software adicionales para abordar los desafíos derivados de la microscopía criogénica correlativa.

  • ZEN
  • Kit de herramientas ZEN Connect
  • Caja de herramientas de procesamiento ZEN EM
  • SmartSEM y SmartFIB
  • Reducción de desviación criogénica

Aplicaciones

ZEISS Correlative Cryo Workflow en funcionamiento

  • Conjunto de datos LM y EM: desde la vista general de rejilla hasta la región de interés identificada para la tomografía TEM posterior
  • Imagen de FIB de la laminilla preparada; grosor de la laminilla: 230 nm
  • Tomograma segmentado y reconstruido
  • Conjunto de datos LM y EM: desde la vista general de la rejilla hasta la región de interés identificada para la tomografía TEM posterior
  • Imagen de FIB de la laminilla preparada; grosor de la laminilla: 230 nm
    Imagen de FIB de la laminilla preparada; grosor de la laminilla: 230 nm

    Imagen de FIB de la laminilla preparada; grosor de la laminilla: 230 nm

    Imagen de FIB de la laminilla preparada; grosor de la laminilla: 230 nm

  • Tomografía segmentada y reconstruida

Biología celular

Identificación de eventos raros

Los cuerpos polares del huso son difíciles de encontrar en las células de levaduras. Son pequeños y son estructuras que aparecen con poca frecuencia. ZEISS Correlative Cryo Workflow le permite identificar de forma precisa y captar imágenes de dichas estructuras celulares en un estado prácticamente original. El LSM con el detector Airyscan facilita aún más la identificación de estas estructuras para poder captar más detalles en las imágenes. Todas las imágenes, desde la vista general grande de toda la célula hasta las imágenes de alta resolución de estas diminutas estructuras, están organizadas en un proyecto de ZEN Connect que proporciona todos los datos necesarios para volver a ubicar estas estructuras celulares en el FIB-SEM.

Usando Crossbeam, se puede preparar la laminilla de TEM de las regiones especificadas para la tomografía electrónica criogénica. También es posible captar imágenes de volumen. Además, la solución del flujo de trabajo le permite reconectar todos los datos tras la adquisición de las imágenes. Se pueden combinar las imágenes de Crossbeam o los tomogramas del TEM con los datos del LSM y se pueden renderizar en el contexto tridimensional.

Células de levadura teñidas con GFP del NUP (complejo de poro nuclear) y CNM67-tdTomato.
Muestra y tomografía cortesía de M. Pilhofer, ETH Zürich, Suiza

  • Superposición de una imagen de LSM/Airyscan de alta resolución con una imagen de Crossbeam de alto contraste captadas en condiciones criogénicas. La superposición se realizó con ZEN Connect.
  • Reconstrucción del volumen en 3D de células de levadura y segmentación del núcleo (azul oscuro), además de varias mitocondrias.
  • Superposición de una imagen de LSM/Airyscan de alta resolución con una imagen de Crossbeam de alto contraste captadas en condiciones criogénicas. La superposición se realizó con ZEN Connect.
  • Reconstrucción del volumen en 3D de células de levadura y segmentación del núcleo (azul oscuro), además de varias mitocondrias.

Biología celular

Captura de imágenes correlativas del volumen en 3D

Una vez que se han identificado las estructuras celulares, como los cuerpos polares del huso en el sistema LSM, la calidad de imagen superior de ZEISS Crossbeam permite abordar y analizar la ultraestructura usando la captura de imágenes de volumen criogénicas. Incluso con bajas tensiones de aceleración, Crossbeam permite capturar imágenes de alto contraste de muestras vitrificadas no teñidas a la vez que protege la muestra frente a daños. Las imágenes de alta resolución captadas con el LSM y las imágenes de alto contraste del Crossbeam facilitan una superposición precisa de las imágenes. Una vez se reubicó la región de interés en Crossbeam usando ZEN Connect, se adquirieron los conjuntos de datos en 3D de las células identificadas. Se abordaron dos cuerpos polares del huso dentro del volumen correlativo. La orientación de los microtúbulos individuales se vuelve claramente visible en las imágenes de alto contraste, según la dirección de corte del FIB. En el volumen 3D se pudieron identificar otros compartimentos celulares.

Muestra cortesía de M. Pilhofer, ETH Zürich, Suiza

Cuerpo del polo del huso seccionado longitudinalmente dentro de la membrana nuclear (arriba) y microtúbulos seccionados transversalmente fuera de la membrana nuclear (abajo). Tamaño de paso de la imagen de la pila adquirida: 50 nm
Cuerpo del polo del huso seccionado longitudinalmente dentro de la membrana nuclear (arriba) y microtúbulos en sección transversal fuera de la membrana nuclear (abajo). Tamaño de paso de la imagen de la pila adquirida: 50 nm

Cuerpo del polo del huso seccionado longitudinalmente dentro de la membrana nuclear (arriba) y microtúbulos en sección transversal fuera de la membrana nuclear (abajo). Tamaño de paso de la imagen de la pila adquirida: 50 nm

Cuerpo del polo del huso seccionado longitudinalmente dentro de la membrana nuclear (arriba) y microtúbulos seccionados transversalmente fuera de la membrana nuclear (abajo). Tamaño de paso de la imagen de la pila adquirida: 50 nm

  • Células de adenocarcinoma congeladas por inmersión y cultivadas en discos de zafiro.
  • Conjunto de datos en 3D de una célula de adenocarcinoma que muestra el patrón de fisión mitocondrial fuerte.
  • Red autosegmentada de mitocondrias en un subvolumen de un conjunto de datos de Crossbeam.
  • Células de adenocarcinoma congeladas por inmersión y cultivadas en discos de zafiro.
    Células de adenocarcinoma congeladas por inmersión y cultivadas en discos de zafiro.

    Células de adenocarcinoma congeladas por inmersión y cultivadas en discos de zafiro.

    Células de adenocarcinoma congeladas por inmersión y cultivadas en discos de zafiro.

  • Conjunto de datos 3D de una célula de adenocarcinoma que muestra el patrón de fisión mitocondrial fuerte.
    Conjunto de datos 3D de una célula de adenocarcinoma que muestra el patrón de fisión mitocondrial fuerte.

    Conjunto de datos 3D de una célula de adenocarcinoma que muestra el patrón de fisión mitocondrial fuerte.

    Conjunto de datos 3D de una célula de adenocarcinoma que muestra el patrón de fisión mitocondrial fuerte.

  • Red autosegmentada de mitocondrias en un subvolumen de un conjunto de datos de Crossbeam.

Investigación sobre el cáncer

Las células cancerosas presentan un fuerte fenotipo hacia la fisión mitocondrial, lo que explica potencialmente su resistencia a los fármacos. Los métodos de fijación química a menudo crean artefactos como la acumulación de mitocondrias, lo cual se podría malinterpretar como eventos de fisión. La criofijación evita estos artefactos y conserva las muestras en el estado prácticamente original.

El ejemplo muestra células de adenocarcinoma congeladas por inmersión sobre discos de zafiro. Los datos de LSM ya enfatizan una densa red mitocondrial con mayor fisión confirmada a continuación por los datos de Crossbeam. Tras captar las imágenes con LSM y Airyscan, la muestra vitrificada se transfirió a Crossbeam. Se usó ZEN Connect para reubicar las regiones de interés, para solapar el conjunto de datos respectivo tras la adquisición y para organizar todas las imágenes adquiridas.

  • Los estomas y los plastidios internalizados se identificaron con un LSM usando la autofluorescencia de la muestra. Los estomas seleccionados se volvieron a localizar y a captar con Crossbeam.
  • Los estrómulos son claramente visibles en los planos de sección adquiridos con Crossbeam.
  • La reconstrucción en 3D y segmentación de la pila de imágenes FIB revela la morfología de los plastidios. La reconstrucción muestra estrómulos interactuando estrechamente con mitocondrias.
  • Los estomas y los plastidios internalizados se identificaron con un LSM usando la autofluorescencia de la muestra. Los estomas seleccionados se volvieron a localizar y a captar con Crossbeam.
    Los estomas y los plastidios internalizados se identificaron con un LSM usando la autofluorescencia de la muestra. Los estomas seleccionados se volvieron a localizar y a captar con Crossbeam.

    Los estomas y los plastidios internalizados se identificaron con un LSM usando la autofluorescencia de la muestra. Los estomas seleccionados se volvieron a localizar y a captar con Crossbeam.

    Los estomas y los plastidios internalizados se identificaron con un LSM usando la autofluorescencia de la muestra. Los estomas seleccionados se volvieron a localizar y a captar con Crossbeam.

  • Los estrómulos son claramente visibles en los planos de sección adquiridos con Crossbeam.
    Los estrómulos son claramente visibles en los planos de sección adquiridos con Crossbeam.

    Los estrómulos son claramente visibles en los planos de sección adquiridos con Crossbeam.

    Los estrómulos son claramente visibles en los planos de sección adquiridos con Crossbeam.

  • La reconstrucción en 3D y segmentación de la pila de imágenes FIB revela la morfología de los plastidios. La reconstrucción muestra estrómulos interactuando estrechamente con mitocondrias.

Botánica

La respuesta de las plantas a las condiciones ambientales cambiantes, como el aumento de salinidad, es una cuestión importante en la investigación botánica. Las plantas normalmente muestran menos reacciones de estrés cuando hacen frente a estas condiciones cambiantes. Un efecto que se puede observar a nivel de ultraestructura es la formación de los llamados estrómulos, largas extensiones tubulares en los plastidios.

El proyecto ZEN Connect muestra imágenes de diferentes modalidades de captura de imágenes: el LSM se empleó para localizar los estomas y los plastidios internalizados usando la autofluorescencia de la muestra. Tras volver a localizar con éxito la región de interés, la imagen del LSM se superpuso con una imagen general del SEM del estoma seleccionado. Se adquirió una pila de imágenes FIB del estoma. El conjunto de datos EM reveló una mayor formación de estrómulos en los plastidios.

Muestra cortesía de: B. Franzisky, Universidad de Hohenheim, Alemania

  • Arriba: El gusano se captó a temperatura criogénica con un sistema LSM/Airyscan antes de la congelación por sustitución. Abajo: Después se captaron imágenes del gusano embutido y teñido con Crossbeam.
  • Reconstrucción de estructuras celulares como un autofagosoma (AP) o el genoma en diferentes fases mitóticas (*célula en metafase, # célula en telofase).
  • Reconstrucción en 3D de estructuras celulares
  • Arriba: el gusano se captó a temperatura criogénica con un sistema LSM/Airyscan antes de la criosustitución. Abajo: después se captaron imágenes del gusano embutido y teñido con Crossbeam.
    Arriba: el gusano se captó a temperatura criogénica con un sistema LSM/Airyscan antes de la criosustitución. Abajo: después se captaron imágenes del gusano embutido y teñido con Crossbeam.

    Arriba: el gusano se captó a temperatura criogénica con un sistema LSM/Airyscan antes de la criosustitución. Abajo: después se captaron imágenes del gusano embutido y teñido con Crossbeam.

    Arriba: el gusano se captó a temperatura criogénica con un sistema LSM/Airyscan antes de la criosustitución. Abajo: después se captaron imágenes del gusano embutido y teñido con Crossbeam.

  • Reconstrucción de estructuras celulares como un autofagosoma (AP) o el genoma en diferentes fases mitóticas (*célula en metafase, # célula en telofase).
    Reconstrucción de estructuras celulares como un autofagosoma (AP) o el genoma en diferentes fases mitóticas (*célula en metafase, # célula en telofase).

    Reconstrucción de estructuras celulares como un autofagosoma (AP) o el genoma en diferentes fases mitóticas (*célula en metafase, # célula en telofase).

    Reconstrucción de estructuras celulares como un autofagosoma (AP) o el genoma en diferentes fases mitóticas (*célula en metafase, # célula en telofase).

  • Reconstrucción en 3D de estructuras celulares

Biología del desarrollo

Investigación de células mitóticas en C. Elegans

Se fijaron gusanos C. elegans enteros mediante HPF y se captaron imágenes de células embrionarias en metafase in situ mediante microscopía de fluorescencia criogénica. Después, los gusanos cribados se tiñeron con metales pesados mediante congelación por sustitución, se embutieron en resina y se seccionaron para que se pudiera ubicar y captar el mismo volumen a alta resolución, con un elevado contraste, mediante Crossbeam. Usando este flujo de trabajo, se pudo reconstruir correctamente la metafase objetivo. Además, este enfoque permitió unos descubrimientos fortuitos: se pudo correlacionar una intrigante señal de fluorescencia punteada adyacente con un presunto autofagosoma.

De este modo, la microscopía de fluorescencia criogénica de muestras gruesas congeladas a alta presión se puede usar para atrapar y captar estructuras celulares transitorias en un estado casi original; el procesamiento adecuado y la subsiguiente captura de imágenes EM correlativas del volumen permite la reconstrucción de estas arquitecturas objetivo con elevada resolución y en 3D.

Cortesía de Kedar Narayan, Instituto Nacional del Cáncer / NIH y Laboratorio Nacional Frederick para la investigación del cáncer, EE. UU.

Descargas

    • ZEISS Correlative Cryo Workflow

      Your Solution for TEM Lamella Preparation and Volume Imaging under Cryogenic Conditions

      Tamaño de archivo: 7 MB

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