ZEISS Technologien für intraoperative Fluoreszenzbildgebung
Das Unsichtbare sichtbar machen
Fluoreszenz ist die Eigenschaft von bestimmten Atomen und Molekülen, den sogenannten Fluorophoren, Licht zu emittieren, nachdem sie selbst mit Licht einer bestimmten Wellenlänge bestrahlt wurden. Dabei weist das emittierte Licht eine größere Wellenlänge auf als anregende Licht. Die Fluoreszenzmikroskopie baut sowohl auf der Autofluoreszenz als auch auf der Zugabe von Fluoreszenzfarbstoffen auf.1,2 Unter normalem Licht sind Fluoreszenzfarbstoffe meist nicht sichtbar. Ein Operationsmikroskop mit integrierter Fluoreszenztechnologie kann den Farbstoff jedoch hervorheben und damit Tumorgewebe oder Blutgefäße während der Operation sichtbar machen.
Die erste Anwendung der intraoperativen Fluoreszenzbildgebung in der Chirurgie geht auf das Jahr 1948 zurück, als Chirurgen während eines neurochirurgischen Eingriffs die Abbildung intrakranieller Neoplasmen mithilfe von intravenös verabreichtem Fluorescein verbesserten.2,9 Heute gibt es zahlreiche Fluoreszenzmittel, die in verschiedenen chirurgischen Anwendungen zum Einsatz kommen.4,5,6,9 Die intraoperative Fluoreszenzbildgebung hat viele Vorteile: hoher Kontrast, hohe Sensitivität, keine ionisierende Strahlung, einfache Handhabung, Sicherheit und hohe Spezifität.7,8,9 Im Vergleich zur standardmäßigen Betrachtung in Weißlicht ohne Fluoreszenz kann die Echtzeit-Fluoreszenzbildgebung dazu beitragen, krankes Gewebe zu visualisieren und die Tumorränder besser zu erkennen.8 Eine verbesserte Visualisierung der Krebszellen kann außerdem dazu beitragen, eine mögliche Schädigung wichtiger umliegender Strukturen wie Nerven, Blutgefäße, Harnleiter oder Gallenwege zu reduzieren.9
In der anspruchsvollen Mikrochirurgie ist es unerlässlich, verschiedene Visualisierungsmöglichkeiten zu nutzen, um zum richtigen Zeitpunkt die richtigen Entscheidungen zu treffen. Die intraoperativen Fluoreszenz-Technologien1 von ZEISS bieten Ihnen das Werkzeug, das Sie dafür benötigen.
Intraoperative Visualisierung fluoreszenzgefärbter Strukturen in der Tumorchirurgie
Intraoperative Visualisierung fluoreszenzgefärbter Strukturen in der Tumorchirurgie
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BLUE 400 von ZEISS
BLUE 400 von ZEISS ermöglicht die intraoperative Unterscheidung zwischen krankem und gesundem Gewebe. Dieses vollständig in das Mikroskop integrierte Fluoreszenzmodul ist das Einzige, das im Rahmen einer multizentrischen Phase-III-Studie seine Effizienz erfolgreich bewiesen hat.2
Nach der Studie von Esteves et al. aus dem Jahr 2015 sind hochgradige Gliome (Grad III-IV) mit einer Inzidenz von 3,13/100.000 Einwohnern die am häufigsten vorkommenden Hirntumoren in Europa. Der Umfang der Tumorresektion ist ein wesentlicher prognostischer Faktor für das Überleben.3 Studien belegen, dass eine Resektion von mindestens 98 % des Tumorgewebes erforderlich ist, um die Überlebensprognose signifikant zu beeinflussen. Die randomisierte kontrollierte Studie (RCT-Studie) von Stummer et al. (2006) hat gezeigt, dass die Wahrscheinlichkeit für eine vollständige Resektion des Tumors durch die Verwendung von Fluoreszenz mit 5-ALA (5-Aminolävulinsäure) signifikant erhöht wird (65 % vs. 37 %, p<0,0001).2
Wir [...] haben eine gesundheitsökonomische Studie durchgeführt, [...] um zu zeigen, dass wir [mit] BLUE 400 die Ergebnisse für die Patienten verbessern können [...].
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Fluoreszenzgestützte Resektion eines hochgradigen Glioblastoms
Prof. Dr. Andreas Raabe
Direktor und Chefarzt der Universitätsklinik für Neurochirurgie, Inselspital Bern, Schweiz
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ZEISS YELLOW 560
ZEISS YELLOW 560 ist das erste intraoperative Fluoreszenzmodul1, das Strukturen hervorhebt, die mit Fluoreszenzfarbstoffen gefärbt wurden, während nicht gefärbtes Gewebe in nahezu natürlicher Farbe visualisiert wird. Das ermöglicht auch Forschungstätigkeiten mit geeigneten Fluoreszenzfarbstoffen.1
Der Vorteil liegt auf der Hand: Die Tumorresektion wird verbessert, denn gesunde Hirnstrukturen werden indirekt visualisiert und können somit erhalten werden.
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Fluoreszenzgestützte Glioblastomresektion
Prof. Dr. Karl-Michael Schebesch & Dr. Julius Höhne
Klinik und Poliklinik für Neurochirurgie, Universitätsklinikum Regensburg, Deutschland
Constantinos G Hadjipanayis,
Jeffrey N Bruce,
John YK Lee
1
Verwendung von Fluoreszenzmitteln nur entsprechend dem Stand der Zulassung im jeweiligen Land.
2
Stummer W, Pichlmeier U, Meinel T et al: Fluorescence-guided surgery for resection of malignant glioma: a randomized controlled multicentre phase III trial. In: Lancet Oncol 7: 392-401, 2006.
3
Esteves S, Alves M, Castel-Branco M, Stummer W: A Pilot Cost-Effectiveness Analysis of Treatments in Newly Diagnosed High-Grade Gliomas: The Example of 5-Aminoelvulinic Acid Compared With White-Light Surgery. In: Neurosurgery 76: 552–562, 2015.
4
Acerb Fi, Cavallo C, Schebesch KM, et al.: Fluorescein-Guided Resection of Intramedullary Spinal Cord Tumors: Results from a Preliminary, Multicentric, Retrospective Study. In: World Neurosurgery 108: 603-609, 2017.
5
Rey-Dios R, Cohen-Gadol AA: Technical principles and neurosurgical applications of fluorescein fluorescence using a microscope-integrated fluorescence module. In: Acta Neurochirurgica 155(4):701–706, 2013.
6
De Laurentis C, Höhne J, Cavallo C, et al.: The impact of fluorescein-guided technique in the surgical removal of CNS tumors in a pediatric population: results from a multicentric observational study. In: Journal of Neurosurgical Sciences 63(6): 679-687, 2019.
7
Acerbi F, Broggi M, Schebesch KM, et al. Fluorescein-guided surgery for resection of high-grade gliomas: A multicentric prospective phase II study (FLUOGLIO). In: Clinical Cancer Research 24(1): 52-61, 2018.
8
Schebesch KM, Proescholdt M, Höhne J, et al.: Sodium fluorescein-guided resection under the YELLOW 560 nm surgical microscope filter in malignant brain tumor surgery – a feasibility study. In: Acta Neurochirurgica 157(6): 899–904, 2015.
9
Höhne J, Hohenberger C, Proescholdt M, et al. Fluorescein sodium-guided resection of cerebral metastases-an update. In: Acta Neurochirurgica 159: 363-367, 2017.
10
Raabe A, Beck J, Gerlach R, Zimmermann M, Seifert V: Near-Infrared Indocyanine Green Video Angiography: A New Method For Intraoperative Assessment Of Vascular Flow. In: Neurosurgery 52(1):132-139, 2003.
11
Raabe A, Beck J, Seifert V: Technique and image quality of intraoperative indocyanine green angiography during aneurysm surgery using surgical microscope integrated near-infrared video technology. In: Zentralbl Neurochir 66(1):1–6, 2005.
12
Kamp MA, Slotty P, Turowski B, Etminan N, Steiger HJ, Hänggi D, Stummer W: Microscope-integrated quantitative analysis of intraoperative indocyanine green fluorescence angiography for blood flow assessment: first experience in 30 patients. In: Operative Neurosurgery 70(1 Suppl Operative): 65-73, 2012.
13
Mücke T, Reeps C, Wolff KD, et al.: Objective qualitative and quantitative assessment of blood flow with near-infrared angiography in microvascular anastomoses in the rat model. In: Microsurgery 33(4):287-96, 2013.
14
Ye X, Liu XJ, Ma L, et al.: Clinical values of intraoperative indocyanine green fluorescence video angiography with Flow 800 software in cerebrovascular surgery. In: Chinese Medical Journal 126(22): 4232-4237, 2013.
15
Holling M, Brokinkel B, Ewelt C, et al.: Dynamic ICG fluorescence provides better intraoperative understanding of arteriovenous fistulae. In: Operative Neurosurgery 73(Issue suool_1): 93-99, 2013.
16
Ng YP, King NK, Wan KR, et al.: Uses and limitations of indocyanine green videoangiography for flow analysis in arteriovenous malformation surgery. In: Journal of Clinical Neuroscience 20(2): 224-232, 2013.
17
Holzbach T, Artunian N, Spanholtz TA, et al.: Intraoperative Indocyaningrün-Fluoreszenzdiagnostik mittels Operationsmikroskop in der plastischen Chirurgie. In: Handchirurgie, Plastische Chirurgie, Ästhetische Chirurgie 44(2):84-8, 2012.
18
Mücke T, Fichter AM, Schmidt LH, et al.: Indocyanine green videoangiography-assisted prediction of flap necrosis in the rat epigastric flap using FLOW® 800 Tool. In: Microsurgery 37:235–242, 2017.
19
Mücke T, Wolff C, Fichter AM, et al.: Detection of thrombosis in microvessels with8 indocyanine green videoangiography. In: British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery 56(8): 678-683, 2018.
20
Yamato T, Yamamoto N, Numahata T, et al.: Navigation Lymphatic Supermicrosurgery for the Treatment of Cancer-Related Peripheral Lymphedema. In: Vascular and Endovascular Surgery 48(2):139-143, 2014.
21
Höhne J, Schebesch KM, de Laurentis C, Akçakaya MO, Pedersen CB, Brawanski A, Poulsen FR, Kiris T, Cavallo C, Broggi M, Ferroli P, Acerbi F Fluorescein Sodium in the Surgical Treatment of Recurrent Glioblastoma Multiforme. World Neurosurg. 2019 May;125:E158-E164. Epub 2019 Jan 22.
22
Abbildung: Links-temporale Kraniotomie für eine Tumorresektion mit YELLOW 560. Abbildung mit freundlicher Genehmigung von Dr. Peter Nakaji, Barrow Neurological Institute, Phoenix, Arizona, USA
Intraoperative Darstellung der Hirndurchblutung in der Gefäßchirurgie
Intraoperative Darstellung der Hirndurchblutung in der Gefäßchirurgie
ZEISS INFRARED 800
Mit ZEISS INFRARED 800 lassen sich Blutgefäße im Sub-Millimeterbereich visualisieren. Gerade für die vaskuläre Neurochirurgie ist die intraoperative Darstellung der Hirndurchblutung von besonderem Interesse. Die fluoreszenzgestützte Angiographie mittels Indocyaningrün (ICG) erlaubt die qualitative Beurteilung von Gefäßpermeabilität oder pathologischen vaskulären Strukturen – intraoperativ und in Echtzeit. Bereits 2003 zeigten die Ergebnisse einer Feasibility-Studie von Raabe et al., dass die ICG-Fluoreszenzangiographie bei der Beurteilung von Aneurysmen, duralen Fisteln und in der Revaskularisationschirurgie unterstützen kann.10 Die in das Operationsmikroskop integrierte ICG-Angiographie-Funktion bietet ein geeignetes Verfahren zur Visualisierung sowie zur Unterstützung bei der Prüfung und Interpretation des intraoperativen Blutflusses in Gefäßen mit einem Durchmesser von unter 1 mm. Sie kann die frühzeitige Erkennung von Komplikationen unterstützen und so das Risiko für ischämische Schäden sowie für die Notwendigkeit weiterer postoperativer Eingriffe verringern.11
INFRARED 800 hat die neuro- und gefäßchirurgischen Abläufe im OP verändert. Es hilft uns dabei, die wirklich wichtigen Fragen nach dem Clipping oder dem Bypass beantworten [...]. Es hat die Abläufe vereinfacht, die Operationen verkürzt und die Notwendigkeit einer intraoperativen Angiographie fast auf Null gesenkt.
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ZEISS FLOW 800
Ein besonderes Feature von ZEISS INFRARED 800 ist ZEISS FLOW 800, eine einzigartige Fluoreszenzanwendung, bei der Videosequenzen für die visuelle Analyse des vaskulären Blutflusses herangezogen werden können. Die Informationen aus den Videosequenzen werden in Form von Übersichtskarten, Diagrammen oder als direkte Gegenüberstellung aufbereitet. Dies ermöglicht eine detaillierte Analyse der Fluoreszenz-Videos.
Die einfache Bildgebung der Gefäßstrukturen reicht häufig nicht, um eine Hypo- oder Hyperperfusion zu erkennen; hierzu ist eine Quantifizierung der Daten notwendig.12 Studienergebnisse haben gezeigt, dass die FLOW 800-Analysesoftware Chirurgen wertvolle Zusatzinformationen bei der intraoperativen Beurteilung der arteriellen Durchlässigkeit und des regionalen Blutdurchflusses liefert.13–16
FLOW 800 ist ein wichtiges Visualisierungsanalyse-Tool in der AVM-Chirurgie, denn es hilft uns, die Hämodynamik hinter einer AVM schnell nachzuvollziehen. Ich arbeite seit mehreren Jahren mit FLOW 800 [...] und für mich ist es mittlerweile unentbehrlich geworden.
Wissenschaftliche Präsentation
-
47 Min. Videodauer
Karl-Michael Schebesch
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1
Verwendung von Fluoreszenzmitteln nur entsprechend dem Stand der Zulassung im jeweiligen Land.
2
Stummer W, Pichlmeier U, Meinel T et al: Fluorescence-guided surgery for resection of malignant glioma: a randomized controlled multicentre phase III trial. In: Lancet Oncol 7: 392-401, 2006.
3
Esteves S, Alves M, Castel-Branco M, Stummer W: A Pilot Cost-Effectiveness Analysis of Treatments in Newly Diagnosed High-Grade Gliomas: The Example of 5-Aminoelvulinic Acid Compared With White-Light Surgery. In: Neurosurgery 76: 552–562, 2015.
4
Acerb Fi, Cavallo C, Schebesch KM, et al.: Fluorescein-Guided Resection of Intramedullary Spinal Cord Tumors: Results from a Preliminary, Multicentric, Retrospective Study. In: World Neurosurgery 108: 603-609, 2017.
5
Rey-Dios R, Cohen-Gadol AA: Technical principles and neurosurgical applications of fluorescein fluorescence using a microscope-integrated fluorescence module. In: Acta Neurochirurgica 155(4):701–706, 2013.
6
De Laurentis C, Höhne J, Cavallo C, et al.: The impact of fluorescein-guided technique in the surgical removal of CNS tumors in a pediatric population: results from a multicentric observational study. In: Journal of Neurosurgical Sciences 63(6): 679-687, 2019.
7
Acerbi F, Broggi M, Schebesch KM, et al. Fluorescein-guided surgery for resection of high-grade gliomas: A multicentric prospective phase II study (FLUOGLIO). In: Clinical Cancer Research 24(1): 52-61, 2018.
8
Schebesch KM, Proescholdt M, Höhne J, et al.: Sodium fluorescein-guided resection under the YELLOW 560 nm surgical microscope filter in malignant brain tumor surgery – a feasibility study. In: Acta Neurochirurgica 157(6): 899–904, 2015.
9
Höhne J, Hohenberger C, Proescholdt M, et al. Fluorescein sodium-guided resection of cerebral metastases-an update. In: Acta Neurochirurgica 159: 363-367, 2017.
10
Raabe A, Beck J, Gerlach R, Zimmermann M, Seifert V: Near-Infrared Indocyanine Green Video Angiography: A New Method For Intraoperative Assessment Of Vascular Flow. In: Neurosurgery 52(1):132-139, 2003.
11
Raabe A, Beck J, Seifert V: Technique and image quality of intraoperative indocyanine green angiography during aneurysm surgery using surgical microscope integrated near-infrared video technology. In: Zentralbl Neurochir 66(1):1–6, 2005.
12
Kamp MA, Slotty P, Turowski B, Etminan N, Steiger HJ, Hänggi D, Stummer W: Microscope-integrated quantitative analysis of intraoperative indocyanine green fluorescence angiography for blood flow assessment: first experience in 30 patients. In: Operative Neurosurgery 70(1 Suppl Operative): 65-73, 2012.
13
Mücke T, Reeps C, Wolff KD, et al.: Objective qualitative and quantitative assessment of blood flow with near-infrared angiography in microvascular anastomoses in the rat model. In: Microsurgery 33(4):287-96, 2013.
14
Ye X, Liu XJ, Ma L, et al.: Clinical values of intraoperative indocyanine green fluorescence video angiography with Flow 800 software in cerebrovascular surgery. In: Chinese Medical Journal 126(22): 4232-4237, 2013.
15
Holling M, Brokinkel B, Ewelt C, et al.: Dynamic ICG fluorescence provides better intraoperative understanding of arteriovenous fistulae. In: Operative Neurosurgery 73(Issue suool_1): 93-99, 2013.
16
Ng YP, King NK, Wan KR, et al.: Uses and limitations of indocyanine green videoangiography for flow analysis in arteriovenous malformation surgery. In: Journal of Clinical Neuroscience 20(2): 224-232, 2013.
17
Holzbach T, Artunian N, Spanholtz TA, et al.: Intraoperative Indocyaningrün-Fluoreszenzdiagnostik mittels Operationsmikroskop in der plastischen Chirurgie. In: Handchirurgie, Plastische Chirurgie, Ästhetische Chirurgie 44(2):84-8, 2012.
18
Mücke T, Fichter AM, Schmidt LH, et al.: Indocyanine green videoangiography-assisted prediction of flap necrosis in the rat epigastric flap using FLOW® 800 Tool. In: Microsurgery 37:235–242, 2017.
19
Mücke T, Wolff C, Fichter AM, et al.: Detection of thrombosis in microvessels with8 indocyanine green videoangiography. In: British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery 56(8): 678-683, 2018.
20
Yamato T, Yamamoto N, Numahata T, et al.: Navigation Lymphatic Supermicrosurgery for the Treatment of Cancer-Related Peripheral Lymphedema. In: Vascular and Endovascular Surgery 48(2):139-143, 2014.
21
Höhne J, Schebesch KM, de Laurentis C, Akçakaya MO, Pedersen CB, Brawanski A, Poulsen FR, Kiris T, Cavallo C, Broggi M, Ferroli P, Acerbi F Fluorescein Sodium in the Surgical Treatment of Recurrent Glioblastoma Multiforme. World Neurosurg. 2019 May;125:E158-E164. Epub 2019 Jan 22.
22
Abbildung: Links-temporale Kraniotomie für eine Tumorresektion mit YELLOW 560. Abbildung mit freundlicher Genehmigung von Dr. Peter Nakaji, Barrow Neurological Institute, Phoenix, Arizona, USA
Intraoperative Fluoreszenzbildgebung in der rekonstruktiven Chirurgie
Intraoperative Fluoreszenzbildgebung in der rekonstruktiven Chirurgie
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Beispielvideo für die Anwendung von INFRARED 800 zur Überprüfung einer lymphovenösen Anastomose. Mit freundlicher Genehmigung von PD Dr. Christian Taeger, leitender und geschäftsführender Oberarzt Abteilung für Plastische, Hand- und Wiederherstellungschirurgie, Universitätsklinikum Regensburg, Deutschland.
ZEISS INFRARED 800
INFRARED 800 von ZEISS ermöglicht die fluoreszenzgestützte Beurteilung des Blutflusses nach dem Anlegen einer Anastomose und stellt die Gefäßdurchgängigkeit des transplantierten Gewebes dar – typischerweise bei freien Lappenplastiken.
Die Studie von Holzbach et al. 201217 belegt, dass die ICG-Fluoreszenzangiographie vor allem im intraoperativen Einsatz ein nützliches, schnell durchführbares und sicheres Verfahren bei der Lappenplastik darstellt. Die Ergebnisse von Mücke et al. zeigen, dass FLOW 800 als solides Analyse-Tool zur intraoperativen Kontrolle der Lappendurchblutung18 sowie zur intraoperativen Identifizierung von Thrombosen19 beiträgt. Die Studie von Yamamoto et al. 201420 hat ergeben, dass die intraoperative ICG-Lymphographie die Identifizierung der Lymphgefäße erleichtert und eine präzise Begutachtung der Anastomosen ermöglicht.
Die Integration der Fluoreszenztechnologie in das Operationsmikroskop sorgt beim Chirurgen bei klinisch nicht eindeutigen Situationen während der Operation für mehr Sicherheit. Störungen des Blutflusses können schnell erkannt und notwendige chirurgische Interventionen sofort eingeleitet werden. Die Methode kann die komplikationslose Einheilung von Haut- und Gewebetransplantaten besser vorhersagen und Hinweise auf beginnende Thrombosen geben.
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Mit freundlicher Genehmigung von Prof. Dr. Milomir Ninkovic, Chefarzt, Klinik für Plastische, Rekonstruktive, Hand- und Verbrennungschirurgie, Klinikum Bogenhausen.
Beispielvideo für die Anwendung von INFRARED 800 zur Überprüfung des Blutflusses nach Anlegen einer Anastomose
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Verwendung von Fluoreszenzmitteln nur entsprechend dem Stand der Zulassung im jeweiligen Land.
2
Stummer W, Pichlmeier U, Meinel T et al: Fluorescence-guided surgery for resection of malignant glioma: a randomized controlled multicentre phase III trial. In: Lancet Oncol 7: 392-401, 2006.
3
Esteves S, Alves M, Castel-Branco M, Stummer W: A Pilot Cost-Effectiveness Analysis of Treatments in Newly Diagnosed High-Grade Gliomas: The Example of 5-Aminoelvulinic Acid Compared With White-Light Surgery. In: Neurosurgery 76: 552–562, 2015.
4
Acerb Fi, Cavallo C, Schebesch KM, et al.: Fluorescein-Guided Resection of Intramedullary Spinal Cord Tumors: Results from a Preliminary, Multicentric, Retrospective Study. In: World Neurosurgery 108: 603-609, 2017.
5
Rey-Dios R, Cohen-Gadol AA: Technical principles and neurosurgical applications of fluorescein fluorescence using a microscope-integrated fluorescence module. In: Acta Neurochirurgica 155(4):701–706, 2013.
6
De Laurentis C, Höhne J, Cavallo C, et al.: The impact of fluorescein-guided technique in the surgical removal of CNS tumors in a pediatric population: results from a multicentric observational study. In: Journal of Neurosurgical Sciences 63(6): 679-687, 2019.
7
Acerbi F, Broggi M, Schebesch KM, et al. Fluorescein-guided surgery for resection of high-grade gliomas: A multicentric prospective phase II study (FLUOGLIO). In: Clinical Cancer Research 24(1): 52-61, 2018.
8
Schebesch KM, Proescholdt M, Höhne J, et al.: Sodium fluorescein-guided resection under the YELLOW 560 nm surgical microscope filter in malignant brain tumor surgery – a feasibility study. In: Acta Neurochirurgica 157(6): 899–904, 2015.
9
Höhne J, Hohenberger C, Proescholdt M, et al. Fluorescein sodium-guided resection of cerebral metastases-an update. In: Acta Neurochirurgica 159: 363-367, 2017.
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Raabe A, Beck J, Gerlach R, Zimmermann M, Seifert V: Near-Infrared Indocyanine Green Video Angiography: A New Method For Intraoperative Assessment Of Vascular Flow. In: Neurosurgery 52(1):132-139, 2003.
11
Raabe A, Beck J, Seifert V: Technique and image quality of intraoperative indocyanine green angiography during aneurysm surgery using surgical microscope integrated near-infrared video technology. In: Zentralbl Neurochir 66(1):1–6, 2005.
12
Kamp MA, Slotty P, Turowski B, Etminan N, Steiger HJ, Hänggi D, Stummer W: Microscope-integrated quantitative analysis of intraoperative indocyanine green fluorescence angiography for blood flow assessment: first experience in 30 patients. In: Operative Neurosurgery 70(1 Suppl Operative): 65-73, 2012.
13
Mücke T, Reeps C, Wolff KD, et al.: Objective qualitative and quantitative assessment of blood flow with near-infrared angiography in microvascular anastomoses in the rat model. In: Microsurgery 33(4):287-96, 2013.
14
Ye X, Liu XJ, Ma L, et al.: Clinical values of intraoperative indocyanine green fluorescence video angiography with Flow 800 software in cerebrovascular surgery. In: Chinese Medical Journal 126(22): 4232-4237, 2013.
15
Holling M, Brokinkel B, Ewelt C, et al.: Dynamic ICG fluorescence provides better intraoperative understanding of arteriovenous fistulae. In: Operative Neurosurgery 73(Issue suool_1): 93-99, 2013.
16
Ng YP, King NK, Wan KR, et al.: Uses and limitations of indocyanine green videoangiography for flow analysis in arteriovenous malformation surgery. In: Journal of Clinical Neuroscience 20(2): 224-232, 2013.
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Holzbach T, Artunian N, Spanholtz TA, et al.: Intraoperative Indocyaningrün-Fluoreszenzdiagnostik mittels Operationsmikroskop in der plastischen Chirurgie. In: Handchirurgie, Plastische Chirurgie, Ästhetische Chirurgie 44(2):84-8, 2012.
18
Mücke T, Fichter AM, Schmidt LH, et al.: Indocyanine green videoangiography-assisted prediction of flap necrosis in the rat epigastric flap using FLOW® 800 Tool. In: Microsurgery 37:235–242, 2017.
19
Mücke T, Wolff C, Fichter AM, et al.: Detection of thrombosis in microvessels with8 indocyanine green videoangiography. In: British Journal of Oral and Maxillofacial Surgery 56(8): 678-683, 2018.
20
Yamato T, Yamamoto N, Numahata T, et al.: Navigation Lymphatic Supermicrosurgery for the Treatment of Cancer-Related Peripheral Lymphedema. In: Vascular and Endovascular Surgery 48(2):139-143, 2014.
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Höhne J, Schebesch KM, de Laurentis C, Akçakaya MO, Pedersen CB, Brawanski A, Poulsen FR, Kiris T, Cavallo C, Broggi M, Ferroli P, Acerbi F Fluorescein Sodium in the Surgical Treatment of Recurrent Glioblastoma Multiforme. World Neurosurg. 2019 May;125:E158-E164. Epub 2019 Jan 22.
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Abbildung: Links-temporale Kraniotomie für eine Tumorresektion mit YELLOW 560. Abbildung mit freundlicher Genehmigung von Dr. Peter Nakaji, Barrow Neurological Institute, Phoenix, Arizona, USA
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2
Stummer W, Pichlmeier U, Meinel T et al: Fluorescence-guided surgery for resection of malignant glioma: a randomized controlled multicentre phase III trial. In: Lancet Oncol 7: 392-401, 2006.
3
Esteves S, Alves M, Castel-Branco M, Stummer W: A Pilot Cost-Effectiveness Analysis of Treatments in Newly Diagnosed High-Grade Gliomas: The Example of 5-Aminoelvulinic Acid Compared With White-Light Surgery. In: Neurosurgery 76: 552–562, 2015.
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Acerb Fi, Cavallo C, Schebesch KM, et al.: Fluorescein-Guided Resection of Intramedullary Spinal Cord Tumors: Results from a Preliminary, Multicentric, Retrospective Study. In: World Neurosurgery 108: 603-609, 2017.
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Rey-Dios R, Cohen-Gadol AA: Technical principles and neurosurgical applications of fluorescein fluorescence using a microscope-integrated fluorescence module. In: Acta Neurochirurgica 155(4):701–706, 2013.
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De Laurentis C, Höhne J, Cavallo C, et al.: The impact of fluorescein-guided technique in the surgical removal of CNS tumors in a pediatric population: results from a multicentric observational study. In: Journal of Neurosurgical Sciences 63(6): 679-687, 2019.
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Acerbi F, Broggi M, Schebesch KM, et al. Fluorescein-guided surgery for resection of high-grade gliomas: A multicentric prospective phase II study (FLUOGLIO). In: Clinical Cancer Research 24(1): 52-61, 2018.
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Schebesch KM, Proescholdt M, Höhne J, et al.: Sodium fluorescein-guided resection under the YELLOW 560 nm surgical microscope filter in malignant brain tumor surgery – a feasibility study. In: Acta Neurochirurgica 157(6): 899–904, 2015.
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Höhne J, Hohenberger C, Proescholdt M, et al. Fluorescein sodium-guided resection of cerebral metastases-an update. In: Acta Neurochirurgica 159: 363-367, 2017.
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Raabe A, Beck J, Gerlach R, Zimmermann M, Seifert V: Near-Infrared Indocyanine Green Video Angiography: A New Method For Intraoperative Assessment Of Vascular Flow. In: Neurosurgery 52(1):132-139, 2003.
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Raabe A, Beck J, Seifert V: Technique and image quality of intraoperative indocyanine green angiography during aneurysm surgery using surgical microscope integrated near-infrared video technology. In: Zentralbl Neurochir 66(1):1–6, 2005.
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Kamp MA, Slotty P, Turowski B, Etminan N, Steiger HJ, Hänggi D, Stummer W: Microscope-integrated quantitative analysis of intraoperative indocyanine green fluorescence angiography for blood flow assessment: first experience in 30 patients. In: Operative Neurosurgery 70(1 Suppl Operative): 65-73, 2012.
13
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Abbildung: Links-temporale Kraniotomie für eine Tumorresektion mit YELLOW 560. Abbildung mit freundlicher Genehmigung von Dr. Peter Nakaji, Barrow Neurological Institute, Phoenix, Arizona, USA
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![Das robotergestützte Visualisierungssystem ZEISS KINEVO 900 S mit Roboterarm, Kameras und zwei Monitoren neben einem großen Bildschirm auf einem fahrbaren Stativ.]({"xsmall":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/kinevo-900-s/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.100.100.7,0,1281,1274.file/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg","small":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/kinevo-900-s/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.360.360.7,0,1281,1274.file/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg","medium":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/kinevo-900-s/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.768.768.7,0,1281,1274.file/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg","large":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/kinevo-900-s/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1024.1024.7,0,1281,1274.file/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg","xlarge":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/kinevo-900-s/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1274.1274.7,0,1281,1274.file/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg","xxlarge":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/kinevo-900-s/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1274.1274.7,0,1281,1274.file/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg","max":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/kinevo-900-s/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1274.1274.7,0,1281,1274.file/kinevo-900-s-side-by-side-1-1.jpg"} "ZEISS KINEVO 900 S")
![ZEISS PENTERO 800 S]({"xsmall":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/image_related_products_pentero800s.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.100.100.file/image_related_products_pentero800s.jpg","small":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/image_related_products_pentero800s.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.360.360.file/image_related_products_pentero800s.jpg","medium":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/image_related_products_pentero800s.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.768.768.file/image_related_products_pentero800s.jpg","large":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/image_related_products_pentero800s.jpg/_jcr_content/renditions/original./image_related_products_pentero800s.jpg","xlarge":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/image_related_products_pentero800s.jpg/_jcr_content/renditions/original./image_related_products_pentero800s.jpg","xxlarge":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/image_related_products_pentero800s.jpg/_jcr_content/renditions/original./image_related_products_pentero800s.jpg","max":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/image_related_products_pentero800s.jpg/_jcr_content/renditions/original./image_related_products_pentero800s.jpg"} "ZEISS PENTERO 800 S")
![ZEISS TIVATO 700]({"xsmall":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.100.100.38,0,1038,1000.file/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg","small":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.360.360.38,0,1038,1000.file/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg","medium":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.768.768.38,0,1038,1000.file/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg","large":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1000.1000.38,0,1038,1000.file/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg","xlarge":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1000.1000.38,0,1038,1000.file/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg","xxlarge":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1000.1000.38,0,1038,1000.file/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg","max":"https://www.zeiss.com/content/dam/med-hcp/reference-master/product-portfolio/surgical-microscopes/images/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg/_jcr_content/renditions/original.image_file.1000.1000.38,0,1038,1000.file/zeiss_tivato_700_16_1_2024.jpg"} "ZEISS TIVATO 700")