
Microscopes cliniques de ZEISS
Les microscopes certifiés pour votre laboratoire cliniqueLa microscopie joue un rôle crucial dans les environnements cliniques et hospitaliers. Les outils qui la composent sont indispensables aux diagnostics et à la recherche. Ces instruments permettent aux professionnels de santé d'étudier des cellules, des tissus, des microorganismes et d'autres échantillons biologiques au niveau microscopique. La conception et la fabrication des microscopes utilisés à des fins de diagnostic sont soumises à la norme ISO 13485. Découvrez comment ZEISS vous accompagne dans vos flux de tâches cliniques.
Conditions requises relatives au microscope
- Conformité aux normes médicales : la conception et la fabrication des microscopes utilisés à des fins de diagnostic sont soumises à la norme ISO 13485. Cette dernière vise à garantir la sécurité et les performances dans le cadre d'applications médicales. Un microscope destiné spécialement à une utilisation DIV (p. ex. pour examiner des spécimens biologiques comme du sang ou des tissus afin de diagnostiquer une maladie) doit également respecter les réglementations supplémentaires spécifiques au DIV comme le RDIV (règlement UE 2017/746) au sein de l'Union européenne ou le FDA 21 CFR Part 809 pour les produits DIV aux États-Unis.
- Richesse des détails et grossissement : les microscopes cliniques doivent offrir une résolution optique élevée, ainsi qu'un grossissement adéquat pour révéler les détails structurels filigranes dans des spécimens biologiques.
- Design ergonomique : dans un contexte clinique, les utilisateurs passent de longs moments penchés sur leur microscope, si bien que des accessoires comme les ergotubes sont essentiels pour soulager le corps.
- Durabilité et fiabilité : une construction solide et des performances constantes sont primordiales pour satisfaire les nombreux besoins dans un environnement clinique.
- Facilité d'utilisation : des commandes intuitives et une capacité d'adaptation rapide sont vitales pour des flux de tâches efficaces dans des environnements soumis à une forte pression.
- Images en haute résolution : une simple pression sur un bouton du microscope permet d'acquérir rapidement des images extrêmement détaillées.
- Efficacité : les microscopes sont là pour vous aider. Ils réduisent le nombre d'étapes manuelles pour vous faire gagner du temps et vous permettent de vous concentrer sur les échantillons de vos patients.
- Compatibilité avec les techniques de coloration : les microscopes doivent prendre en charge différentes techniques de contraste comme le champ clair ou la fluorescence afin de révéler les structures cellulaires ou microbiennes.
Compatibilité avec les techniques de coloration
Certaines techniques de contraste et de coloration utilisées en microscopie clinique peuvent améliorer la visualisation, faire apparaître des structures spécifiques et permettre de différencier des composants cellulaires ou des microorganismes qui resteraient sinon indiscernables. Les échantillons cliniques sont souvent transparents ou incolores sous un microscope optique. La coloration renforce les contrastes afin de faire ressortir davantage des structures comme les noyaux, le cytoplasme ou les parois cellulaires. Chaque technique réagit avec des composants cellulaires spécifiques. Par exemple, l'hématoxyline et l'éosine (H&E) font ressortir les noyaux et le cytoplasme dans des échantillons de tissus. La coloration de Gram permet pour sa part de différencier les bactéries Gram-positives et Gram-négatives. La coloration révèle également des anormalités structurelles ou cellulaires, ce qui apporte des informations supplémentaires pour diagnostiquer les maladies. Ainsi, la coloration de Pap est utilisée pour faire la différence entre les cellules cancéreuses ou précancéreuses en cytologie. Quant à celle de Ziehl-Neelsen, elle permet de visualiser les bactéries acido-alcoolorésistantes comme le Mycobacterium tuberculosis. Par ailleurs, vous avez la possibilité de combiner différentes techniques de contraste pour améliorer la visibilité de certaines structures au microscope. Le contraste de phase, par exemple, utilise les différences de réfraction de la lumière pour donner à voir les cellules vivantes et non colorées. Quant au contraste par fluorescence, il cible spécifiquement des molécules à l'aide de fluorophores qui permettent d'identifier des pathogènes ou des marqueurs de cellule.
Découvrez ici des exemples de techniques de contraste et de coloration très courantes :
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Le contraste en champ clair est l'une des techniques les plus courantes en laboratoire clinique. La coloration renforce les contrastes ce qui permet de voir des structures et des détails au microscope :
Coloration à l'hématoxyline et à l'éosine (H&E)
Il s'agit de la coloration la plus utilisée en histopathologie sur les échantillons de tissus.
Composants :
L'hématoxyline colore les noyaux en bleu/violet.
L'éosine colore le cytoplasme et la matrice extracellulaire en rose.Applications :
Visualisation de l'architecture des tissus et de la morphologie des cellules.
Diagnostique les maladies, identifier les anomalies dans la structure des organes.
Coloration de Gram
Essentielle en microbiologie pour catégoriser les bactéries en Gram-positive ou Gram-négative.
Composants :
Violet cristallisé (coloration primaire), iode (mordant), alcool (décolorant) et safranine (contre-coloration).Applications :
Identification d'infections bactériennes.Coloration de Ziehl-Neelsen (acido-alcoolorésistante)
Colore les organismes acido-alcoolorésistants comme le Mycobacterium tuberculosis.
Composants :
Fuchsine phéniquée (coloration primaire), acide-alcoolique (décolorant) et bleu de méthylène ou vert malachite (contre-coloration).Applications :
Diagnostic d'infections mycobactériennes comme la tuberculose.
Coloration de Wright ou de Giemsa
Répandue en hématologie pour les frottis sanguins et les échantillons de moelle osseuse.
Composants :
Mélange de colorants acides (éosine) et basiques (bleu ou azur de méthylène).Applications :
Identification des cellules sanguines, des parasites (p. ex. Plasmodium de la malaria) et des déséquilibres hématologiques comme l'anémie.
Coloration de Papanicolaou (Pap)
Utilisée surtout en cytologie, en particulier pour le dépistage du cancer du col de l'utérus.
Composants :
Plusieurs colorants, dont de l'hématoxyline, de l'orange G et de l'éosine-azur.Applications :
Visualisation de cellules anormales ou cancéreuses dans, p. ex., des frottis du col de l'utérus ou des aspirations à l'aiguille fine.
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Le contraste de phase est surtout utilisé pour observer des spécimens non colorés et transparents. Il est ainsi tout indiqué dans les environnements cliniques dans lesquels des cellules vivantes ou des structures fragiles doivent être examinées sans modifier leur état naturel.
Voici quelques utilisations courantes :
- Cellules vivantes : observation de structures cellulaires comme les noyaux, les vacuoles et les organites.
- Microorganismes : identification de bactéries, champignons, protozoaires ou parasites dans leurs états vivants et actifs.
- Morphologie et motilité des spermatozoïdes : examen des cellules du sperme au cours d'études de fertilité.
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La microscopie en fluorescence est synonyme de sensibilité et de spécificité élevées pour visualiser les composants cellulaires, les microorganismes et les marqueurs moléculaires. Elle repose sur des fluorophores (colorants ou anticorps avec marqueurs) qui émettent de la lumière à une certaine longueur d'onde lorsqu'ils sont excités par une source lumineuse. L'utilisation de ces colorations et de ces anticorps spécifiques permet aux cliniciens d'étudier les pathogènes, le matériel génétique et les fonctions cellulaires. Découvrez ci-dessous les principales techniques de coloration et leurs applications dans les environnements cliniques.
DAPI
Le DAPI se lie fortement à l'ADN. Cette technique est utilisée pour visualiser les noyaux cellulaires.
Applications :
Décompte et viabilité des cellules : Évaluation de la morphologie nucléique dans des échantillons de tissu ou des cultures cellulaires.Détection microbienne : marquage de l'ADN de bactéries ou de champignons dans les échantillons cliniques.
Isothiocyanate de fluorescéine (FITC)
Ce fluorophore se lie à des anticorps, des protéines ou d'autres biomolécules.
Applications :
Identification de pathogènes : détection d'antigènes spécifiques de bactéries, de virus ou de champignons.
Cytométrie de flux : marquage de cellules immunitaires pour l'analyse de marqueurs spécifiques (p. ex. CD4, CD8 dans le suivi du VIH).Hybridation in situ en fluorescence (FISH)
Utilise des échantillons d'ADN/ARN avec marquage par fluorescence pour détecter des séquences génétiques spécifiques.
Applications :
Détection d'amplifications de gènes (p. ex. HER2 pour le cancer du sein, ALK pour le cancer du poumon).
Identification d'anormalités, de délétions ou de translocations chromosomiques.
Détection d'ADN/ARN bactérien ou viral directement dans les échantillons cliniques.
Auramine-rhodamine
Se lie à l'acide mycolique dans les parois cellulaires des mycobactéries.
Applications :
Détection de bacilles acido-alcoolorésistants (Mycobacterium tuberculosis) dans les expectorations ou d'autres échantillons.
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La microscopie par polarisation est utilisée pour observer des matériaux biréfringents qui modifient la polarisation de la lumière. Cette technique est particulièrement pratique pour identifier des substances possédant des propriétés optiques propres, comme les structures cristallines, les fibrilles et des dépôts biologiques. Certains spécimens sont naturellement biréfringents, alors que d'autres nécessitent une coloration spécifique pour renforcer cette propriété.
Applications :
- Identification de la goutte (cristaux d'urate monosodium) ou de la pseudogoutte (cristaux de pyrophosphate de calcium) dans le liquide synovial.
- Confirmation de dépôts amyloïdes dans les biopsies à l'aide de la coloration au rouge Congo.
- Caractérisation de la composition de cristaux (acide urique, oxalate de calcium, etc.) dans les sédiments d'urine.
- Mesure de dépôts de collagène dans les maladies fibrogènes à l'aide de la coloration au rouge Sirius.
- Identification de dépôts de calcium dans les tissus et les fluides (p. ex. coloration au rouge alizarine).
- Visualisation de fuseau mitotique pour évaluer la qualité et la maturité d'ovocytes dans les technologies de reproduction médicalement assistée
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